Наверх
ПРОТИВОПАРАЗИТАРНЫЕ ПРЕПАРАТЫ
  • все
  • ПРОТИВОПАРАЗИТАРНЫЕ ПРЕПАРАТЫ
  • АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫЕ ПРЕПАРАТЫ
  • БИОБЕЗОПАСНОСТЬ
  • ДРУГОЕ
Скачать

Птицеводство

Эпидемиология красного куриного клеща и акарицидная активность фоксима 50% (БайМайт®) в альтернативных условиях содержания кур-несушек в период яйцекладки

Б. Майер-Кулинг1, Дж. Хайне2, Дж. Мюллер-Линдлоф1, К. Пфистер3 ()

Ветеринарная клиника для птиц и свиней “Am Bergweg”, Лоне, Германия

2 Bayer HealthCare AG, Защита здоровья животных, Леверкузен, Германия

3 Институт тропической медицины и паразитологии, Факультет ветеринарной медицины,

Университет Людвига Максимилиана, Мюнхен, Германия

Резюме

Целью настоящего исследования была оценка эпидемиологических особенностей и динамики популяции красных куриных клещей (Dermanyssus gallinae) в течение одного года в двух птичниках с разными системами содержания кур-несушек: с многоуровневой системой содержания птицы и с одноуровневой системой с планчатым полом. В обоих птичниках в прошлом отмечались эпизоды инфестации (нападения, заражения) D. gallinae, обработка клеток проводилась в моменты, когда они были пусты. В настоящем исследовании, клещи были обнаружены в ловушках в обоих птичниках через 26 и 39 дней после заселения их курами. Число клещей постоянно увеличивалось с момента первого их обнаружения до момента первой обработки фоксимом. Наибольшее количество клещей обнаруживалось в ловушках, расставленных в местах кормления и отдыха в обеих системах содержания птиц. Спрей фоксима 2000 чнм против D. gallinae использовали дважды с перерывом в семь дней в обеих системах на 227/234 и 278/285 дни. Снижение количества клещей после обработки составляло от 99,3% до 90,0% в многоуровневой и от 97% до 94,5% в одноуровневой системе содержания с планчатым полом. Свидетельств влияния увеличения численности популяции клещей на количество откладываемых в среднем за день яиц или число погибших кур не было.

Введение

Красный куриный клещ Dermanyssus gallinae (Рис.1) – значимый кровососущий эктопаразит кур-несушек. На птицефермах эти клещи живут в клетках, где содержатся куры, образуя заметные невооруженным глазом колонии, особенно в области лотков для корма и клетках (Cencek 2003). Красные клещи остаются на теле хозяина только для кормления, в основном ночью, в течение 0,5-1,5 часов. В случае тяжелых инфестаций, клещей можно обнаружить на курах и в течение дня.

Самки клещей откладывают примерно 30 яиц за всю жизнь (Chauve 1998). На птицефермах развитие клеща из яйца во взрослую особь может завершиться за одну неделю, и, таким образом, численность популяции клещей может расти очень быстро.

Дикие птицы, такие как воробьи, могут переносить клещей и служить резервуаром (Hoffmann 1987).

Эти кровососущие паразиты вызывают раздражимость и беспокойство у пораженных птиц, и, как было продемонстрировано в данном исследовании, являются причиной снижения яйценоскости и даже гибели птиц (Schneider and Haa. 1971). Также описано снижение числа эритроцитов и снижение гематокрита (Kirkwood 1967).

Кроме того, красный куриный клещ является потенциальным переносчиком возбудитетей тяжелых заболеваний, таких как Erysipelothrix rhusiopathiae (Chirico et al. 2003) и Salmonella gallinarum (Zeman et al. 1982).

Клещи могут также атаковать людей, вызывая у последних кожные реакции, например, крапивницу (Auger et al. 1979, Beck 1999).

Кроме того, при раздавливании клеща образуются кровавые пятна на поверхности яиц, что снижает их товарное качество (Cencek 2003).

В зависимости от сезона, популяции клещей могут возобновляться за период от 0 до 3 месяцев, с момента обновления куриного поголовья в птичнике (Nordenfors и Hoeglund 2000). В ловушках, расставленных в типичных местах для укрытия на птицефермах, можно обнаружить большие, но иногда значительно изменяющиеся количества особей клещей (Schneider and Haa. 1971, Nordenfors et al. 2001, Chirico and Tauson 2002).

Мнения относительно влияния обработки против D. gallinae различны. Beugnet et al. (1997) сделали заключение, что обработка, в целом, малоэффективна и повторные инфестации отмечаются в течение 4-8 недель.

Meyer-Kuhling et al. (2005) продемонстрировали, что можно эффективно контролировать численность D. gallinae в условиях клеточного содержания кур при зараженности окружающей среды клещами с помощью эмульгируемого концентрата, содержащего 50% фоксима, в течение 49 дней. Для этого продукта органы здравоохранения Франции определили период ожидания (задержки) сбора яиц в 0 дней и период ожидания (задержки) забора мяса в 25 дней.

Целью настоящего исследования было проследить и продемонстрировать влияние увеличения численности популяции клещей D. Gallinae на показатели производительности кур в течение всего периода яйцекладки. Поскольку содержание кур в клетках с 31 декабря 2011 года в ЕС будет запрещено, для этого исследования были выбраны следующие системы содержания кур-несушек: многоуровневая и одноуровневая с планчатым полом. Эффективность обработки фоксимом против D. gallinae также была оценена в этих двух альтернативных системах содержания.

Материалы и методы

Птичники

Птичники, использованные в данном исследовании, были выбраны с учетом давно и хорошо известной проблемы инфестации D. Gallinae. В данном исследовании изучены многоуровневая система содержания с выгулом птицы и одноуровневая система содержания с планчатым полом.

Многоуровневая система содержания птиц Big Dutchman Natura

Система содержания птиц Big Dutchman Natura (Рис. 2) была заселена 9000 кур породы Lohmann Selected Leghorn. Эта система состоит из нескольких уровней с областью для кормления, отдыха и кладки яиц. Конструкция идентична в правой и левой части птичника. В птичнике оборудована зона для прининга (зона ухода за перьевым покровом) и два зимних сада, соединенных с внешним пространством. Эти отделения были соединены настенными впускными клапанами. Многоуровневая система состояла из металлической конструкции, металлических ярусов, пластиковых планок и поилок, кормушек, укрепленных муфтами, фиксирующими верхние металлические ярусы, насестов, поперечин и пластиковых конвейерных лент для уборки помета под каждым ярусом. В обеих частях птичника 84 гнезда были снабжены автоматической системой сбора яиц и организованы в два этажа, имели специальную пластиковую вкладку, расположенную в нижней части проволочной решетки. В птичниках осуществлялась программа смены дня и ночи, и гнезда открывались и закрывались автоматически. Циркуляция воздуха регулировалась стенными вентиляторами, стенными впускными клапанами и воздуховодами. Средняя температура в птичнике составляла 18 ± 2 °C, но в летнее время она была выше: со дня 123 до дня 161 температура составляла 22 ± 2 °C; со дня 162 до дня 225 температура составляла 26 ± 4 °C.

Одноуровневая система содержания кур Big Dutchman с пластиковыми планками

В системе содержания кур Big Dutchman с пластиковыми планками (Рис. 3) было 5750 кур породы Lohmann Brown. Эта одноуровневая система состояла на 2/3 из пластиковых планок с металлическими ярусами, пластиковых поилок, кормушек, зафиксированных креплениями вышерасположенных металлических ярусов, одного уровня с гнездами и на 1/3 из зоны для прининга. Конструкция системы с пластиковыми планками одинакова в левой и правой части птичника. Помет собирали под пластиковыми планками. В обеих частях птичника располагалось по 42 гнезда, снабженных автоматической системой сбора яиц и специальной пластиковой вкладкой, расположенной в нижней части проволочной решетки. Как и в птичнике, гнезда открывались и закрывались автоматически под управлением программы смены дня и ночи. Циркуляция воздуха регулировалась настенными вентиляторами, настенными впускными клапанами и воздуховодами. Средняя температура в птичнике составляла 20 ± 2 °C, но в летнее время она была выше: со дня 138 до дня 201 температура составляла 26 ± 3 °C.

Профилактические мероприятия

В период последней яйцекладки обработка против эктопаразитов в обеих системах содержания птиц не проводилась. Однако в пустых птичниках, при сообщении об инфестации Dermanyssus, была проведена обработка. В период санитарного разрыва (сервисного обслуживания), целью которого является очистка и дезинфекция помещений перед заселением новых партий птицы, применялась дезинфекция 2% формальдегидом и особая обработка против клещей с помощью диметоата 0,15% (Danadim®, Dr. Stahler GmbH & Co. KG, Германия). Период сервисного обслуживания составлял три недели. После заселения ветеринарные врачи регулярно осматривали стада птицы и проводили клиническую оценку на предмет выявления инфекционных и других заболеваний. Антигельминтный препарат, флубендазол (Flubendazol 5%®, Bela-Pharm Arzneimittel GmbH & Co. KG, Германия), вводился вместе с кормом в соответствии с рекомендациями компании-производителя; обработку начинали сразу после обнаружения в помете кур яиц гельминтов. После этого антигельминтную обработку повторяли через десять недель (многоярусник) или через 13 недель (система содержания с планчатым полом). Оба стада своевременно вакцинировали против инфекционного бронхита и атипичной чумы птиц – двух инфекций, которые могут привести к снижению яйценоскости и гибели птиц.

Ловушки для клещей

Для оценки развития популяции клещей в течение примерно года, в рамках исследования, т.е. с момента заселения птичника молодыми курами до выселения кур-несушек, были использованы ловушки, изготовленные из картона (Рис. 4A, 4B).

Была использована специальная картонная ловушка (Meyer-Kuhling et al. 2005). Эта ловушка представляет собой модификацию картонной ловушки, описанной Nordenforsи Chirico (2001).

Она сделана из двух слоев картона с деревянным шпателем, помещенным между двумя половинами, благодаря которому создается зазор 2 мм между слоями картона. Чтобы зафиксировать ловушки, были использованы зажимы и конструкция из болтов и металлического листа, надежно прикрепленного к головкам болтов. Чтобы предотвратить репеллентное действие клеящих материалов, для фиксации ловушек не использовали клеящие ленты. Ловушка с отверстием в центре крепилась на болт и надежно фиксировалась с помощью винта.

Перед началом исследования в обоих помещениях были выбраны наиболее привлекательные для клещей места. Они располагались в зоне кормления и отдыха птицы, на насестах, в гнездах и на пластиковых планках. В этих местах было размещено от 8 до 16 ловушек, каждое место размещения ловушки было помечено порядковым номером, который заносили в план устройства птичника. В течение первых четырех недель ловушки меняли раз в неделю после обработки, а в течение оставшегося периода – каждые две недели. В целом было размещено 48 ловушек в пяти местах (Рис. 2) на каждый день экспозиции. Ловушки были размещены: 1) в гнездах (16 ловушек); 2) на креплениях кормушек (8 ловушек); 3) на пластиковых планках (8 ловушек); 4) на поперечинах (8 ловушек); 5) под насестами (8 ловушек). В системе содержания с планчатым полом было размещено 32 ловушки в трех особых участках (Рис. 3) на каждый день экспозиции: 1) в гнездах (16 ловушек); 2) на креплениях кормушек (8 ловушек); 3) на пластиковых планках (8 ловушек).

Ловушки собирали через 24 часа после размещения и осторожно переносили в пластиковые пакеты с застежкой, отмечали на них дату сбора, птичник, из которого они были забраны, имя владельца и номер ловушки, а затем помещали в охлажденный бокс в лаборатории и хранили при –18 °C в течение не менее 48 часов, чтобы убить всех клещей. После этого всех клещей из пакета и из открытой ловушки переносили в чашки Петри, подсчитывали с учетом стадии развития и фиксировали данные. При небольших количествах клещей в ловушке (до 350 клещей/в ловушке) их подсчитывали с использованием стереомикроскопа Zeiss 2000C. При больших количествах клещей их взвешивали с помощью микрограммовых весов (Mettler AE 163, 0,00001г), а затем подсчитывали 10-20% от измеренного веса клещей, а для получения общего количества особей умножали результат в соответствии с весовой долей.

Уменьшение числа клещей (эффективность) в % = a/b x 100

a: число клещей в соответствующий день после обработки

b: число клещей в соответствующий день до обработки

Среднее геометрическое и доверительные интервалы для каждой ловушки подсчитывали отдельно по яйцам клещей, личинкам, нимфам и взрослым особям, а также по общему числу особей (личинки + нимфы + взрослые особи) по каждому дню исследования. Кроме того, геометрическое среднее по числу клещей в каждой ловушке (объединенные данные) было рассчитано для каждой области размещения ловушек. После обработки также вычисляли геометрическое среднее и с помощью методов статистики сравнивали его с геометрическим средним по дню до обработки, при этом данные были изменены логарифмически с использованием t-теста. Обусловленное обработкой снижение числа клещей (эффективность в %) вычисляли следующим образом:

Спрей-обработка фоксимом

Обработка фоксимом (ByeMite®, Bayer AG, Леверкузен, Германия) проводилась по запросу фермеров с целью профилактики негативного влияния клещей на работников фермы. Для распыления препарата был использован компрессор с пульверизатором для получения спрея большой емкости с крупными каплями. Согласно инструкциям производителя, для эффективного контроля численности D. gallinae, концентрация раствора фоксима для получения спрея должна составлять 2000 ppm в клеточной системе, а объем, требуемый для обработки всех материалов в такой системе – 0,025 л на одно куриное место (Meyer-Kuhling et al. 2005).

В данном исследовании раствор фоксима 2000 ppm для получения спрея был приготовлен в емкости непосредственно перед распылением, путем разбавления 100 мл ByeMite® (50% E.C. фоксима) в 25 л воды. Раствор распыляли дважды с интервалом в семь дней в обоих птичниках.

Для альтернативных систем содержания птицы, таких как многоуровневая и одноуровневая система, рекомендаций компании относительно дозы препарата пока нет. Следовательно, доза на одно куриное место в клетке может рассматриваться как экспериментальная. С учетом этого было важно убедиться, что все материалы и оборудование в одноуровневой или многоуровневой системе были обработаны должным образом. Первая обработка была окончена, когда все инфицированные клещами материалы были пропитаны раствором препарата. Во время второго распыления препарата все не пораженные клещами области и места укрытия были обработаны более тщательно, а объем использованного раствора отличался от такового, использованного во время первой обработки.

Перед распылением корм и яйца удаляли из птичников. Все яйца, отложенные во время проведения обработки, были уничтожены. Во время обработки в кормушках не было корма, они были наполнены сразу же после проведения обработки.

Многоуровневая система содержания птицы

В птичнике в первый день обработки в целом было использовано 150 л раствора фоксима. Этот объем эквивалентен 0,017 л на одно куриное место. При второй обработке в 210 день было использовано 230 л раствора препарата, что соответствовало 0,026 л на одно куриное место. Каждая обработка длилась примерно три часа.

Одноуровневая система содержания с пластиковыми планками

В системах содержания с пластиковыми планками при первой обработке в день 278 в целом было использовано 140 л раствора, что соответствовало 0,024 л на одно куриное место. При второй обработке в 285 день в целом было использовано 185 л раствора фоксима, что эквивалентно 0,032 л на одно куриное место. Каждая обработка длилась примерно два часа.

Результаты

Многоуровневая система содержания птицы

В птичнике первые клещи были обнаружены на 26 день (Taб. 1), при этом на одну ловушку приходилось 0,04 клеща (доверительный интервал – ДИ: 0–0,1). После этого численность популяции клещей постепенно повышалась до 222 дня, последнего дня подсчета клещей до обработки. В среднем максимальное число обнаруженных клещей составляло 247,7 (ДИ: 90,1 – 677,8) на 194 день исследования. Плотность клещей зависела от места их сбора (Рис. 5). Со 124 дня до 222 дня в трех из пяти заранее определенных место сбора в ловушках было обнаружено от 600 до 3000 клещей. Наибольшее число клещей было зафиксировано в ловушках, расположенных на насестах, поперечинах и креплениях кормушек, и составляло 2650,2 (ДИ: 2233,8–3144,3) на 222 день; 1182,3 (ДИ: 965,2–1448,2) на 194 день и 3112,1 (ДИ: 2528,9–3829,8) на 194 день. Число клещей, попавших в ловушки, расположенные в гнездах и на пластиковых планках, было ниже, максимальное значение составляло 25,8 (ДИ: 17,7-37,6) на 194 день и 40,0 (ДИ: 25,5-63,2) на 208 день (Рис. 5).

Доли яиц клещей, личинок, нимф и взрослых особей оставались постоянными в течение всего исследования. За исключением дней 40, 152, 194 и 390, когда преобладали взрослые особи, нимфы были наиболее многочисленны в течение всего исследования (Taб. 1).

Начиная со 152 дня, присутствие D.gallinae оказывало все более выраженное влияние на условия работы в ангаре. Однако никакого влияния на среднее число яиц в день и на число погибших кур отмечено не было.

Среднее количество клещей на всех стадиях жизни на одну ловушку после обработки было значительно ниже (p < 0,001), чем до обработки, в течение всего периода до окончания исследования (Taб. 1).

После двух обработок фоксимом, первоначально направленных на защиту работников, число клещей (все формы) снизилось на 99,3% - 90,0% в период с 243 до 390 дня по сравнению с численностью клещей до обработки. Начиная с 362 дня, т.е. через 127 дней после обработки, число клещей снова незначительно увеличилось.

После первого распыления препарата до 6 недели среднее число откладываемых за неделю яиц колебалось от 97,8% до 90,9% (Рис. 7) и стало снижаться к 40-й неделе. Рост численности популяции клещей не влиял на количество яиц. Также число погибших кур не зависело от степени пораженности клещами и изменялось от 0,1% до 0,4% в течение всего исследования. Оба этих показателя были сравнимы с таковыми, зафиксированными в предыдущих циклах яйцекладки на птицеферме, и находились в границах нормы для данной породы.

Дни

Взрослые особи

Нимфы

Личин ки

Яйца

Объединенные

Дни

Взрос лые особи

Нимфы

Личин ки

Яйца

Объеди

ненные

1

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

222

70,3 (16,2–294,7)

101,7 (32,5–314,0)

4,1

(1,0-12,4)

12,1

(3,0–42,0)

192,8

(65,0–568,2)

12

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

227

Применение спрея фоксима

234

Применение спрея фоксима

26

0

(0–0)

0,04

(0–0,1)

0

(0–0)

0

(0–0)

0,04

(0–0,1)

237

3,1** (1,1–7,0)

4,3**

(1,8–9,0)

0,1**

(0–0,3)

0,7**

(0,1–1,6)

6,9**

(3,1–14,1)

40

0,2

(0,1-0,5)

0,1

(0,1-0,4)

0

(0–0)

0

(0–0)

0,3

 (0–0,7)

243

0,6** (0–1,5)

1,1**

(0,3–2,2)

0**

(0–0,1)

0,2**

(0,1–0,5)

1,4**

(0,5–3,0)

54

0,3

(0–0,7)

0,4

(0,1–1,0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0,6

(0,2–1,3)

250

1,0** (0,2–2,5)

1,3**

(0,3–3,0)

0**

(0–0,1)

0,3**

(0,1–0,7)

2,0**

(0,6–4,3)

68

0,5

(0–1,1)

0,9

(0,1–2,3)

0

(0–0)

0

(0–0)

1,1

(0,3–2,6)

257

0,8** (0,1–2,0)

1,1**

(0,3–2,5)

0**

(0–0)

0,1**

(0,1–0,4)

1,6**

(0,5–3,5)

82

2,4

(0,6-6,1)

2,8

(0,7–7,4)

0

(0–0,1)

0,3

(0,1–0,9)

4,2

(1,4–10,5)

264

1,2** (0,3–2,7)

1,7**

(0,6–3,8)

0**

(0,1–0,1)

0,3**

(0–0,9)

2,5**

(1,0–5,3)

96

4,5

(1,3-12,1)

4,7

(1,3–13,4)

0,2

(0,1–0,4)

1,1

(0,2–2,7)

7,8

(2,6–20,5)

278

1,4** (0,4–3,1)

1,7**

(0,5–3,7)

0,1**

(0,1–0,2)

0,5**

(0–1,1)

2,6**

(0,9–5,6)

110

7,5

(1,8–24,5)

8,4

(2,4–25,2)

0,4

(0,1–1,1)

1,8

(0,4–4,7)

12,9

(3,9–38,4)

292

1,7** (0,4–3,9)

2,3**

(0,8–5,0)

0,1**

(0–0,2)

0,5**

(0–1,2)

3,4**

(1,3–7,4)

124

11,3

(2,6–41,2)

12,6

(3,1–42,6)

0,7

(0–1,9)

3,0

(0,6–8,8)

20,5

(5,8–66,9)

306

1,1** (0,2–2,7)

1,6**

(0,5–3,4)

0,1**

(0–0,2)

0,4**

(0–0,8)

2,3**

(0,8–5,0)

138

11,3

(3,4–71,3)

24,0

(5,2–100,2)

2,0

(0,4–5,8)

7,9

(1,7–27,8)

36,8

(9,0–141,6)

320

0,8** (0,1–2,1)

1,5**

(0,3–3,6)

0,1**

(0,1–0,2)

0,2**

(0,1–0,7)

1,9**

(0,6–4,4)

152

24,4

(5,4-100,0)

23,2

(5,0–95,8)

2,1

(0,5–5,5)

6,1

(1,4–20,1)

42,7

(10,9–159,3)

334

0,9** (0,1–2,2)

1,6**

(0,5–3,5)

0**

(0–0,2)

0,3**

(0,1–0,8)

2,1**

(0,7–4,7)

166

32,1

(7,4–129,6)

39,7

(10,8–139,5)

1,5

(0,3–3,8)

6,7

(1,5–22,9)

72,5

(22,0–234,2)

348

2,0** (0,5–5,1)

3,6**

(1,1–9,4)

0,1**

(0–0,4)

0,9**

(0,1–2,3)

5,2**

(1,9–12,1)

180

66,6

(16,7-256,8)

94,3

(29,4–297,1)

2,3

(0,5–6,4)

10,3

(2,3–37,7)

181,2

(64,0–505,5)

362

2,9** (0,7–8,4)

4,6**

(1,4–12,0)

0,1**

(0–0,4)

1,4**

(0,2–3,5)

6,2**

(2,0–16,2)

194

126,5

(31,4–500,8)

87,6

(32,5–233,5)

2,0

(0,5–5,3)

13,2

(3,3–45,8)

247,7

(90,1–677,8)

376

9,1** (2,4–28,8)

11,5** (3,8–31,6)

0,5**

(0,1–1,4)

2,9**

(0,7–7,9)

19,3**

(6,7–52,5)

208

77,4

(18,6–313,2)

85,4

(28,7–250,0)

2,5

(0,7–6,5)

13,1

(3,2–46,1)

182,0

(63,2–520,5)

390

10,9** (3,2–32,7)

9,0**

(2,9–25,2)

0,5**

(0–1,3)

2,7**

(0,7–7,3)

18,7**

(6,6–50,0)

Таб. 1

Многоуровневая система содержания птицы:

Стадии развития D.gallinae и объединенные данные по клещам

(личинки, нимфы, взрослые особи) в каждой ловушке (48 ловушек) –

среднее геометрическое (доверительный интервал) и влияние спрея фоксима

на 227 и 234 день (**: отличается от числа особей перед обработкой на день 222, p < 0,001)

Одноуровневая система содержания с пластиковыми планками

В системе с пластиковыми планками первые клещи были обнаружены на 39 день (Taб. 2). После этого популяция клещей постепенно росла. На 193 день было зафиксировано наибольшее число клещей на одну ловушку, 24,5 (ДИ: 10,4 – 56,2). После 207 дня наблюдалось временное сохранение численности популяции клещей с незначительными отклонениями.

Таб. 2

Система содержания с пластиковыми планками:

Стадии развития D.gallinae и объединенные данные по клещам (личинки, нимфы, взрослые особи) в каждой ловушке (32 ловушки) – среднее геометрическое (доверительный интервал) и влияние спрея фоксима на 278 и 285 день (** и *: отличается от числа особей перед обработкой на 277 день, p < 0,001 и p < 0,05 соответственно)

Дни

Взрослые особи

Нимфы

Личинки

Яйца

Объединенные

Дни

Взрослые особи

Нимфы

Личинки

Яйца

Объединенные

1

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

221

5,6

(2,0–13,3)

10,3

(4,4–22,7)

0,2

(0–0,4)

0,9

(0,1–2,1)

15,3

(6,2–35,8)

11

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

235

5,8

(2,7–11,6)

14,4

(6,0–32,8)

0,6

(0,1–1,3)

1,4

(0,3–3,5)

20,3

(8,7–45,6)

25

0

 (0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

0

(0–0)

249

4,0

(1,8–8,0)

7,3

(3,7–13,8)

0,2

(0–0,4)

0,6

(0,1–1,3)

11,1

(5,5–21,5)

39

0

(0–0)

0,1

(0–0,3)

0

(0–0)

0

(0–0)

0,1

(0–0,3)

263

3,7

(1,6–7,5)

8,9

(4,2–18,1)

0,2

(0–0,4)

0,6

(0,1–1,3)

12,2

(5,7–25,2)

52

0

(0–0,1)

0,2

(0–0,5)

0

(0–0)

0

(0–0,1)

0,2

(0–0,5)

277

3,6

(1,6–7,0)

9,2

(4,9–16,7)

0,2

(0–0,4)

0,4

(0,1–1,0)

12,7

(6,5–24,1)

67

0,1

(0–0,3)

0,2

(0–0,4)

0

(0–0)

0

(0–0)

0,3

(0–0,6)

278

Применение спрея фоксима

285

Применение спрея фоксима

81

0,2

(0–0,4)

0,4

(0,1–0,9)

0

(0–0)

0,1

(0–0,2)

0,6

(0,1–1,1)

291

0,2** (0–0,5)

0,4** (0,1–0,8)

0*

(0–0)

0*

(0–0)

0,6**

(0,2–1,1)

95

0,1

(0,1–0,2)

0,3

(0,1–0,6)

0

(0–0)

0

(0–0)

0,4

(0,1–0,7)

298

0,1** (0–0,3)

0,5** (0,2–0,9)

0*

(0–0)

0*

(0–0)

0,6**

(0,2–1,1)

109

0,3

(0,1–0,6)

0,8

(0,4–1,2)

0

(0–0,1)

0

(0–0)

1,2

(0,7–1,9)

305

0,1** (0–0,3)

0,5** (0,2–0,9)

0*

(0–0)

0*

(0–0)

0,5**

(0,1–1,1)

123

0,9

(0,3–1,7)

2,7

(1,5–4,5)

0

(0–0,1)

0,1

(0–0,3)

3,7

(2,0–6,2)

319

0,2** (0–0,5)

0,4** (0,1–0,8)

0*

(0–0)

0*

(0–0)

0,5**

(0,1–1,1)

137

2,1

(0,6–5,0)

4,5

(2,1–9,0)

0,1

(0,1–0,2)

0,4

(0,1–1,2)

6,6

(3,0–13,7)

333

0,3** (0,1–0,6)

0,3**

(0–0,5)

0*

(0–0)

0*

(0–0)

0,6**

(0,2–1,0)

151

3,8

(1,6–7,9)

9,2

(4,1–19,2)

0,2

(0,1–0,4)

0,7

(0,1–1,9)

14,0

(6,7–28,1)

347

0,3** (0,1–0,5)

0,1**

(0–0,3)

0*

(0–0)

0*

(0–0)

0,4**

(0,1–0,8)

165

3,6

(1,4–8,1)

9,6

(3,6–23,5)

0,3

(0–0,8)

1,0

(0,2–2,4)

13,0

(5,1–31,0)

361

0,2** (0–0,4)

0,3** (0,1–0,6)

0*

(0–0)

0,1*

(0–0,2)

0,5**

(0,2–0,9)

179

6,3

(2,3–15,0)

11,7

(4,8–27)

0,7

(0–2,0)

1,4

(0,2–3,9)

17,9

(7,1–43,0)

375

0,3** (0–0,5)

0,4** (0,2–0,7)

0*

 (0–0,1)

0*

(0–0,1)

0,6**

(0,3–1,1)

193

8,1

(3,3–18,2)

16,2

(6,7–37,3)

0,4

(0,1–1,1)

1,2

(0,2–3,2)

24,5

(10,4–56,2)

382

0,3** (0,1–0,6)

0,4** (0,1–0,7)

0*

(0–0)

0,1*

(0,1–0,4)

0,7**

(0,4–1,2)

207

6,6

(2,5–15,2)

16,5

(7,3–36,0)

0,5

(0–1,2)

0,9

(0,1–2,3)

23,2

(10,2–51,3)

 

 

 

 

 

 

К моменту проведения первой обработки (т.е 277 день после заселения) число клещей незначительно уменьшалось. При сравнении плотности клещей в трех местах их сбора наибольшие значения отмечаются у креплений кормушек, составлявшие 355,6 (ДИ: 236,6 – 534,2) на 193 день (Рис. 6).

Максимальное число клещей, собранных в гнездах и на пластиковых планках, было ниже и составляло 15,3 (ДИ: 13,2 – 17,7) на 207 день и 5,8 (ДИ: 2,4 – 12,5) на 235 день. Свидетельств каких-либо негативных эффектов инфестации D. gallinae обнаружено не было. Инфестация не влияла на скорость кладки яиц и число погибших кур.

За исключением 333 и 347 дней, когда преобладали взрослые особи, процент нимф был наибольшим. В течение 8 недель после обработки в ловушках не обнаруживалось яиц и личинок клещей (Taб. 2). На 278 и 285 дни птичник был обработан, т.к. даже столь небольшие количества клещей стали негативно влиять на работников птицефермы. Общее число клещей (личинки + нимфы = взрослые особи) на одну ловушку после обработки было значительно ниже (p < 0,001), чем до обработки, и это сохранялось в течение всего периода наблюдения. Более того, среднее число взрослых особей и нимф (p < 0,001) и личинок и яиц (p < 0,05) на одну ловушку значительно снижалось (Taб. 2). Обработка фоксимом приводила к снижению численности клещей (объединенные данные) на 97,9% - 94,5% в течение последующих трех месяцев (Tab. 2). После первого распыления среднее число откладываемых в неделю яиц составляло от 95,3% до 86,0%, а число погибших за неделю кур составляло от 0% до 0,2%. Оба этих показателя были сравнимы с таковыми, зафиксированными в предыдущих циклах яйцекладки на птицеферме, и находились в границах нормы для данной породы.

Начиная с 39 недели, число отложенных за неделю яиц постоянно снижалось, а число погибших за неделю кур колебалось от 0,2% до 0,4% и достигало 0,9% в конце исследования на 42 неделе (Рис. 7). Однако нет доказательств того, что подобные экономические потери обусловлены инфестацией D. gallinae.

Обсуждение

В обеих системах – птичнике и системе с пластиковыми планками – D. gallinae обнаруживались на 4-6 неделе после заселения новыми птицами. Раннюю инфестацию также наблюдал Svedberg (1991) в новом птичнике через 12 недель после заселения. Также Nordenfors и Hoeglund (2000) обнаруживали D. gallinaemites в ловушках через 0 – 3 месяца после заселения. Причиной (повторных) инфестаций в целом могут быть пораженные клещами дикие птицы, грызуны и стационарное оборудование (Hoffmann 1987, Eckert et al. 2005).

Также в настоящем исследовании можно было проследить появление клещей и динамику численности их популяции в течение шести недель после заселения вплоть до нескольких особей, которые могли быть занесены на колесах автотранспорта, персоналом, с оборудованием и дикими животными (воробьи и грызуны). Клещи могли попасть внутрь помещения через открытые стенные вентиляторы, стенные впускные клапаны и воздуховоды. Но в то же время нельзя исключить, что некоторые трещины и щели не были обработаны акарицидным препаратом в процессе распыления раствора препарата. Таким образом, небольшое число клещей могло выжить. Также существует вероятность того, что молодые куры уже были поражены D. gallinae в момент заселения.

В нашем исследовании мы не обнаружили никаких доказательств сезонности, но нам пришлось остановить рост популяции клещей по запросу фермеров в целях профилактики развития раздражения кожи у персонала. Напротив, Nordenfors и Hoeglund (2000) подтверждали наблюдения производителей яиц, что в Северном полушарии отмечается повторяющаяся сезонность с повышением числа клещей с мая по июнь и последующим его снижением, начиная с октября.

В настоящем исследовании наблюдались временные колебания числа клещей, пойманных в ловушки в разные дни, но значительных изменений доли юных форм развития клещей не отмечалось. Nordenfors et al. (2001) и Chirico и Tauson (2002) изучали рост популяции клещей в полевых условиях в течение 8 и 10 недель соответственно и также наблюдали колебания в процессе роста популяции. При содержании птиц в птичнике со свободным выгулом Arkle et al. (2004) отметил увеличение популяции до 30 недели после заселения, а затем – стабильное снижение численности популяции клещей в течение 10 недель.

В данном исследовании в обоих птичниках - многоуровневой и одноуровневой системе с пластиковыми планками – клещи были распространены неравномерно. Наибольшее их число отмечалось в зоне питания и отдыха, т.е. в местах скопления птицы. Кроме того, в гнездах и на пластиковых планках отмечалось меньшее число клещей. Неравномерное распространение, возможно, связано с необходимостью соседства с курами, которое необходимо для развития и размножения D. gallinae. Пластиковые вставки в гнездах и пластиковые планки могут не обеспечивать достаточно укромных мест для клещей.

Обработка фоксимом с целью предотвращения появления кожных реакций у персонала птицефермы эффективно снижала зараженность клещами. Длительный эффект фоксима, вероятно, обусловлен сохранением вещества на обработанных поверхностях, но, может быть, и тем, что для возобновления популяции клещей требуется некоторое время при исходно небольшом их числе.

У кур, подвергшихся действию фоксима, никаких клинических признаков недомогания отмечено не было. Это согласуется с данными Heine et al. (2005), которые сообщали об отсутствии побочных эффектов у кур при применении раствора фоксима для обработки клеток.

В данном исследовании, свидетельств негативного влияния повышения численности популяции клещей на количество снесенных за день яиц и число погибших кур не было. Это наблюдение неожиданно и противоречит общепринятому мнению о влиянии инфестации D. gallinae на экономические показатели (Chauve 1998, Eckert et al. 2005). Остается неизвестным, могут ли птицы компенсировать потенциальное влияние повышения численности популяции клещей на показатели их производительности.

В заключение следует сказать, что в альтернативных системах содержания птицы, таких как многоуровневая и одноуровневая система, численность популяции D. gallinae может быстро возрасти после заселения новой партии кур и постоянно увеличиваться в течение периода яйцекладки.

Однако при описанных в данном исследовании условиях обработки, инфестация клещами не приводила к значимым экономическим потерям ни по количеству снесенных яиц, ни по количеству погибших кур. Обработка помещения для содержания птицы раствором фоксима продемонстрировала высокую эффективность против D. gallinae.

Благодарности

Авторы благодарят всех членов Ветеринарной клиники для птиц и свиней “AmBergweg”, Лоне, за содействие в проведении этого исследования. Также благодарим компанию BayerHealthCare AG, подразделение Защита здоровья животных за финансовую поддержку и статистическую обработку данных.

Ссылки

Arkle S, Guy JH, BlackettM, Sparagano O (2004). Variation in the population of Dermanyssus gallinae in a free-range laying unit and effectiveness of chemical control. Br Poult Sci 45:45–46.

Auger A, Nantel J, Meunier N, Harrison JR (1979). Skin acariasis caused by Dermanyssus gallinae (de Geer) an inhospital outbreak. Can Med Assoc J 17:700–703.

Beck W (1999). Farm animals as disease vectors of parasitic epizoonoses and zoophilic dermatophytes and their importance in dermatology. Der Hautarzt 50:621–628.

Beugnet F, Chauve C, Gauthey M, Beert L (1997). Resistance of the poultry redmite to pyrethroids in France. Vet Rec 140:577–579.

Cencek T (2003). Prevalence of Dermanyssus gallinae in poultry farms in the Silesia region in Poland. Bull Vet Inst in Pulawy (Poland) 47:465–469.

Chauve C (1998). The poultry red mite Dermanyssus gallinae (De Geer, 1778): current situation and future prospects for control. Vet Parasitol 79:239–245.

Chirico J, Tauson R (2002). Traps containing acaricides for the control of Dermanyssus gallinae. Vet Parasitol 110:109–116.

Chirico J, Eriksson H, FossumO, Janson D (2003). The poultry red mite, Dermanyssus gallinae, a potential vector of Erysipelothrix rhusiopathiae causing erysipelas in hens.Med Vet Entomol 17:232–234.

Eckert J, Friedhoff KT, Zahner H, Deplazes P (2005). Lehrbuch der Parasitologie fur die Tiermedizin. Enke Verlag, Stuttgart, pp. 369–371.

Heine J, Meyer-Kuhling B, Keita A, Baduel L, Pfister K (2005). Phoxim 50% E.C. (ByeMite®) for treatment of Dermanyssus gallinae in laying hens. Proc. 20th WAAVP, 16–20 October 2005, Christchurch, New Zealand, Abstract p. 273.

Hoffmann G (1987). Vogelmilbe als Lastlinge, Krankheitserzeuger und Vektoren beiMensch und Nutztier. Dt tierarztl Wschr 95:7–10.

Kirkwood AC (1967). Anaemia in poultry infested with the red mite Dermanyssus gallinae. Vet Rec 80:514–516.

NordenforsH, Chirico J (2001). Evaluation of a sampling trap for Dermanyssus gallinae (Acari: Dermanyssidae). J Econ Entomol 94:1617–1621.

Meyer-Kuhling B, Pfister K, Muller-Lindloff J, Heine J (2005). Phoxim 50% E.C. (ByeMite®) zur Behandlung von Dermanyssus gallinae bei Legehennen unter Praxisbedingungen. Proc. Tagung der DVG-Fachgruppe Parasitologie und Parasitare Krankheiten: Diagnostik, Epidemiologie und Bekampfung von Parasitosen bei Nutz-, Haus- und Heimtieren, 23–24 June 2005, Potsdam, p. 19.

Nordenfors H, Hoglund J, Tauson R, Chirico J (2001). Effect of permethrin impregnated plastic strips on Dermanyssus gallinae in loose-housing systems for laying hens. Vet Parasitol 102:121–131.

Nordenfors H, Hoeglund J (2000). Long-term dynamics of Dermanyssus gallinae in relation to control measures in aviary systems for layers. Br Poult Sci 41:533–540.

Schneider J, Haa. K (1971). Untersuchungen zur Schadwirkung der roten Vogelmilbe (Dermanyssus avium) in Intensivhuhnerbestanden. BerlMunch tierarztlWschr 84:130–132.

Svedberg J (1991). Distribution of mites (Dermanyssus gallinae) in a voletage-system for layers. Proc. Int Congr Animal Hyg, Leipzig, pp. 176–182.

Zeman P, Stika V, Skalka B, Bartik M, Dusbabek F, Lavickova M (1982). Potential role of Dermanyssus gallinae De Geer, 1778 in the circulation of the agent of pullurosis-typhus in hens. Folia Parasitol (Prague) 29:371–374.